1. TEDE
  2. CAMPUS SEROPÉDICA
  3. Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias
  4. Mestrado em Ciências Veterinárias
???item.export.label??? ???item.export.type.endnote??? ???item.export.type.bibtex???

Please use this identifier to cite or link to this item: https://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/2345
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.creatorFaria, Fernanda Sousa-
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/8872370455608218por
dc.contributor.advisor1Angelo, Isabele da Costa-
dc.contributor.advisor-co1Camargo, Mariana Guedes-
dc.contributor.referee1Angelo, Isabele da Costa-
dc.contributor.referee2Chaves, Douglas Siqueira de Almeida-
dc.contributor.referee3Bezerra, Simone Quinelato-
dc.date.accessioned2022-07-12T16:28:20Z-
dc.date.issued2019-08-27-
dc.identifier.citationFARIA, Fernanda Sousa Compatibilidade de Beauveria sp. e Metarhizium sp. com óleo essencial da espécie vegetal Schinus molle L. e eficácia no controle de larvas de Aedes aegypti. 2019. 31 f. Dissertação (Mestrado em Ciências Veterinárias) - Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2019.por
dc.identifier.urihttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/2345-
dc.description.resumoO presente estudo avaliou a compatibilidade entre os isolados CG 206 de Beauveria sp. e CG 153 de Metarhizium sp. associados ao óleo essencial de Schinus molle L. (aroeira-salsa) e sua eficácia no controle de larvas de A. aegypti. Para compatibilidade entre fungos e óleo, foram avaliadas as unidades formadoras de colônia (UFC) e avaliação de diâmetro de colônia. Cinquenta microlitros de suspensões com e sem óleo (nas concentrações de 75 e 25ppm) a 1,1×103 e 1,3×103 conídios mL-1 respectivamente foram espalhados em cinco placas contendo BDEL+ cloranfenicol (0,5%) e incubado (25o±1°C e UR≥80%). Após sete dias o número de colônias foi quantificado. Para avaliação de diâmetro de colônia, dez microlitros das suspensões sem e com óleo a 25ppm foram inoculados no centro de placas de Petri contendo BDEL+cloranfenicol (0,5%) e incubados (25o±1°C e UR≥80%). Os pontos de inóculo, foram mensurados durante 7 dias. No teste de avaliação de eficácia de S. molle as larvas (L2) foram expostas a 22,5 mL do OE nas concentrações 25, 50, 75 e 100ppm e o grupo controle foi imerso em em água desclorada estéril + tween 80, onde observou-se a taxa de sobrevivência durante sete dias. No ensaio biológico com fungo e OE, conídios de Beauveria sp. CG 206 ou Metarhizium sp. CG 153, cultivados em BDA, foram suspensos em água desclorada estéril + tween 80 (0,01%) na concentração de 1x107 conídios mL-1. Para preparação das suspensões fúngicas acrescidas de óleo, cada 10 mL de suspensão fúngica recebeu 0,0025% do OE. Grupos contendo 15 larvas (N=45) L2 foram imersas em 22,5mL das suspensões. O grupo controle foi imerso em água desclorada estéril+tween 80. A taxa de sobrevivência das larvas foi avaliada diariamente por sete dias. Os testes de UFC e diâmetro de colônia foram submetidos ao teste de Mann-Whitney. Os ensaios biológicos foram submetidos análise não paramétrica (Kruskal-Wallis), seguido do teste SNK (Student-Newman-Keuls). A curva de sobrevivência e o cálculo da média de sobrevivência (S50) foi realizada utilizando Kaplan-Meier. O nível de significância foi de 5% (P≤0,05). Nos testes da UFC observou-se que o OE a 75 ppm e 25 ppm diminuíram o número de colônias formadas; a queda nos percentuais de UFC foram de 72,33% (CG 153+75ppm), 43,92% (CG 206+75ppm), 67,96% (CG 153+25ppm) e 27,55% (CG 206+25ppm). Na avaliação do crescimento de colônia não houve diferença entre suspensões com e sem óleo de ambos os isolados. No teste de eficácia do OE de S. molle, o óleo foi eficaz nas concentrações de 50, 75 e 100 ppm e, a 25ppm foi escolhido para compor as suspensões, pelo alto percentual de sobrevivência dar larvas (88,26%). Nos ensaios biológicos, as suspensões apresentaram eficácia, sendo os melhores resultados observados nos tratamentos com o isolado CG 153 de Metarhizium sp. 107 conídios mL-1 associado ou não ao óleo, onde obteve-se o S50 das larvas de 1 dia. Conclui-se que ambos fungos e o óleo essencial são compatíveis e, apesar de não haver ação adjuvante, são boas opções para controle de larvas de A. aegypti.por
dc.description.abstractThe present study evaluated the compatibility between the CG 206 of Beauveria sp. and CG 153 Metarhizium sp. Isolates associated with the essential oil of Schinus molle L. (aroeira-salsa) and its effectiveness in controlling A. aegypti larvae. For compatibility between fungi and oil, they were evaluated as colony forming units (CFU) and colony diameter evaluation. Fifty microliters of oil and non-oil suspensions (at concentration 75 and 25ppm) at 1.1 × 103 and 1.3 × 103 conidia mL-1, respectively, spread on five identified plates BDEL + chloramphenicol (0.5%) and incubated (25 ± 1 °C and RH≥80%). After seven days or number of colonies was quantified. To evaluate the colony diameter, ten microliters of oil-free and 25ppm oil suspension were inoculated into the center of Petri dishes containing BDEL + chloramphenicol (0.5%) and incubated (25o ± 1 °C and RH≥80%). Inoculum points were measured for 7 days. In the S. molle efficacy evaluation test, larvae (L2) were exposed to 22.5 mL of EO at ratings 25, 50, 75 and 100ppm and the control group was immersed in sterile chlorinated water +tween 80 where the survival rate was observed for seven days. In the biological assay with fungus and OE, Beauveria sp. CG 206 or Metarhizium sp. CG 153, grown in BDA, was suspended in sterile chlorinated water + tween 80 (0.01%) at a concentration of 1x107 conidial mL-1. For preparation of the oil-added fungal suspensions, each 10 ml fungal suspension received 0.0025% of the EO. Groups containing 15 larvae (N = 45) L2 were immersed in 22.5mL of suspensions. The control group was immersed in sterile chlorinated water + tween 80. A larval survival rate was evaluated daily for seven days. CFU tests and colony diameter were submitted to the Mann-Whitney test. Biological assays were submitted to nonparametric analysis (Kruskal-Wallis), followed by SNK test (Student-Newman-Keuls). Survival curve and survival averaging (S50) was performed using Kaplan-Meier. The significance level was 5% (P≤0.05). In CFU tests, 75 ppm and 25 ppm decreases the number of colonies formed; CFU percentages were 72.33% (CG 153 + 75ppm), 43.92% (CG 206 + 75ppm), 67.96% (CG 153 + 25ppm) and 27.55% (CG 206 + 25ppm). In the evaluation of colony growth, there was no difference between oil and non-oil suspensions of both isolates. In no efficacy test of S. molle EO, the oil was effective in the 50, 75 and 100 ppm tests and a 25 ppm was chosen to compose it as suspensions, for the largest percentage of larvae duration (88.26%). In biological assays, as described suspensions, the best results were observed in the treatments with CG 153 Metarhizium sp. 107 conidia mL-1 associated or not with oil, where the larvae S50 was 1 day. It is concluded that both fungi and essential oil are compatible and, although there is no adjuvant action, are good options for controlling A. aegypti larvae.eng
dc.description.provenanceSubmitted by Jorge Silva (jorgelmsilva@ufrrj.br) on 2022-07-12T16:28:20Z No. of bitstreams: 1 2019 - Fernanda Sousa Faria.pdfeng
dc.description.provenanceMade available in DSpace on 2022-07-12T16:28:20Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2019 - Fernanda Sousa Faria.pdfeng
dc.formatapplication/pdf*
dc.thumbnail.urlhttps://tede.ufrrj.br/retrieve/69888/2019%20-%20Fernanda%20Sousa%20Faria.pdf.jpg*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.publisher.departmentInstituto de Veterináriapor
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Ciências Veterináriaspor
dc.relation.referencesALKHAIBARI, A. M.; CAROLINO A. T.; J. C.; SAMUELS R. I.; BUTT T. M.; Differential Pathogenicity of Metarhizium blastospores and conidia against larvae of three mosquito species. J Med Entomol. v.54 n.3 p 696–704 mai. 2017. ALVES, S. B.; Fungos entomopatogênicos. In: Alves, S.B. (Ed.), Controle microbiano de insetos. FEALQ: Piracicaba,289–382p. 1998. ARAÚJO JR, J. M.; MARQUES, E. J.; OLIVEIRAJ. V. D. Potential of Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana isolates and Neem oil to control the aphid Lipaphiserysimi (Kalt.) (Hemiptera: Aphididae). Neotropical Entomology v.38 n.4 p.520-525. 2009. ARAÚJO, H. R. C.; CARVALHO, D. O.; IOSHINO, R. S.; COSTA-DA-SILVA, A. L.; CAPURRO, M. L. Aedes aegypti Control Strategies im Brazil: Incorporation of New Technologies to Overcome the Persistence of Dengue Epidemics. Insects, v.6 n. 2 p. 576-594, jun. 2015 BARATA, E. A. M. D. F.; COSTA, A. I. P. D.; NETO, F. C.; GLASSER, C. M. BARATA, J. M. S.; NATA, D.; População de Aedes aegypti (l.) em área endêmica de dengue, Sudeste do Brasil. Rev. Saúde Pública, São Paulo, v. 35, n. 3, p. 237-242, jun. 2001. BARRERA, R.; AMADOR, M.; MUNOZ, J.; ACEVEDO, V. Integrated vector control of Aedes aegypti mosquitoes around target houses. Parasites &Vectors, v. 11, fev. 2018. BATISTA, L.C.D S.O.; CID, Y.P.; ALMEIDA, A.P.D.; PRUDÊNCIO, E.R.; RIGER, C.J.; SOUZA, M.A.A.D.; COUMENDOUROS, K.; CHAVES, D.S.A. In vitro efficacy of essential oil sand extracts of Schinus molle L. against Ctenocephalides felis felis. Parasitology. v. 143, n. 5, p. 627-638, abr. 2016. BERNARDO, C. C. Conídios e blastosporos de Metarhizium spp. e Beauveria bassiana: virulência para Rhipicephalus microplus e resposta ao calor e à radiação UV-B. 2016. 93p. Tese (Doutorado em Medicina Tropical e Saúde Pública) – Universidade Federal de Goiás, Goiânia. 2016. BHATT, S.; GETHING, P. W.; BRADY, O. J.; MESSINA, J. P.; FARLOW, A. W.; et al.Theglobal distribution and burden of Dengue. Nature. v. 496. p. 504-507, abr. 2013. BITENCOURT, R. O. B.; FARIA, F. S.; RODRIGUES, C. J. B. C.; SILVA, E. M.; CORVAL, A. R. C.; GOLO, P. S.; PONTES, E. G.; BITTENCOURT, V. R. E. P.; ANGELO, I. C. In vitro Control of Aedes aegypti Larvae Using Beauveria bassiana.. WORLD ACADEMY OF SCIENCE, ENGINEERING AND TECHNOLOGY, v. 12, p. 400-404, 2018. BITTENCOURT, V. R. E. P.; MASCARENHAS, A. G.; FACCINI, J. L. H. Mecanismo de infecção do fungo Metarhizium anisopliae no carrapato Boophilus microplus em condições experimentais. Ciência Rural, Santa Maria, RS, v. 29, n.2, p. 351-354, 1999. BRAGA, I. A.; VALLE, D. Aedes aegypti: histórico do controle no Brasil. Epidemiol. Serv. Saúde, Brasília, v.16, n.2, p. 113-118, jun. 2007a. BRAGA, I. A.; VALLE, D.; Aedes aegypti: insecticides: mechanisms of action and resistance. Epidemiol. Serv. Saúde, Brasília, v. 16, n. 4, p. 179-293, dez. 2007b. BRASIL, MINISTÉRIO DA SAÚDE. Secretaria de Vigilância em Saúde. Diretoria Técnica de Gestão.Avaliação da eficácia de análogos de hormônio juvenil e inibidores da síntese de quitina no controle de Aedes aegypti Brasília: Ministério da Saúde; set. 2005. BUTT, T. M.; GREENFIELD, B. P. J.; GREIG, C.; MAFFEIS, T. G. G.; TAYLOR, J. W. D.; PIASECKA, J.; EASTWOOD, D. C. Metarhizium anisopliae Pathogenesis of Mosquito Larvae: A Verdict of Accidental Death. PLoS ONE, v.8 n. 12, 2013. CAROLINO, A.T.; PAULA, A.R.; SILVA, C.P.; BUTT, T.M.; SAMUELS, R.I. Monitoring persistence of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae under simulated field conditions with the aim of controlling adult Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Parasit. Vectors, Campos de Goytacazes, v. 198 abri. 2014. CASTILLO, R. M.; STASHENKO, E.; DUQUE, J. E. Insecticidal and Repellent Activity of Several Plant-Derived Essential Oils Against Aedes aegypti. Journal of the American Mosquito Control Association, v.33, n.1, p. 25–35, mar. 2017. CERNY, T.; SCHWARZ, M.; SCHWARZ, U.; LEMANT, J.; GÉRARIN, P.; KELLER, E. The range of neurological complications in chikungunya fever. Neurocritic Care. v. 27 n.3 p. 447-57, dez. 2017. CHAVES, B.A.; JUNIOR A.B.V.; SILVEIRA K.R.D.; PAZ, A.D.C.; VAZ, E.B.D.C.; et al.Vertical Transmission of Zika Virus (Flaviviridae, Flavivirus) in Amazonian Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) Delays Egg Hatching and Larval Development of Progeny. Journal of Medical Entomology. jul. 2019. COITINHO, R.L.B.C.; OLIVEIRA, J.V.; JUNIOR, M.G.C.G; CÂMARA, C.A.G.; Toxicidade por fumigação, contato e ingestão de óleos essenciais para Sitophilus zeamais Motschulsky, 1885 (Coleoptera: Curculionidae). Ciênc. agrotec., Lavras, v.35, n.1, p. 172-178, fev. 2011. CONSOLI, R.A.G.B.; OLIVEIRA, R.L.Principais mosquitos de importância sanitária no Brasil. Rio de Janeiro: Editora FIOCRUZ, 228p. 1994. DANIEL, J. F. S.; SILVA, A. A.; NAKAGAWA, D. H.; MEDEIROS, L. S. D.; CARVALHO, M. G.; TAVARES, L. J.; ABREU, L. M.; RODRIGUES-FILHO, E.; Larvicidal Activity of Beauveria bassiana Extracts against Aedes aegypti and Identification of Beauvericins. J. Braz. Chem. Soc., São Paulo, v.28, n.6, p. 1003-1013, jun. 2017. DIAS, C. N.; MORAES, D. F. C. Essential oils and their compounds as Aedes aegypti L. (Diptera: Culicidae) larvicides: review. Parasitology Research, v.113(2), p. 565–592, fev. 2014. DONG, Y.; MORTON J.C.; RAMIREZ, J.L.; SOUZA-NETO. J.; DIMOPOULOS, G. The entomopathogenic fungus Beauveria bassiana. activate Toll and JAK-STAT pathway controlled effector genes and anti-dengue activity in Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol. v. 42 p.126-132 Baltimore, fev. 2011 DUARTE, J. A.; ZAMBRANO, L. A. D. B.; QUINTANA, L. D.; ROCHA, M. B.; SCHMITT, E. G. Immuno toxicological Evaluation of Schinus molle L. (Anacardiaceae) Essential Oil in Lymphocytes and Macrophages, Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, vol. 2018, Art. 6541583, out. 2018. ELANDT-JOHNSON, R. &JOHNSON, N. L. Survival models and data analysis John Wiley and Sons, New York, 1980 FALVO, M. L.; MEDINA, P. A.; RODRIGUES, J.; LASTRA, C. C. L.; GARCÍA, J. J.; FERNANDES, E. K. K.; LUZ, C. Effect of UV-B Irradiation on Water-Suspended Metarhizium anisopliae s.l. (Hypocreales: Clavicipitaceae) Conidia and Their Larvicidal Activity in Aedes aegypti (Diptera: Culicidae), Journal of Medical Entomology, v. 55 n. 5 p. 1330-1333, set. 2018 FARNESI, L.C.; VARGAS H.C.M.; VALLE, D.; REZENDE G.L.; Darker eggs of mosquitoes resist more to dry conditions: Melanin enhances serosal cuticle contribution in egg resistance to desiccation in Aedes, Anopheles and Culex vectors PLoS neglected tropical diseases v. 11, p. e0006063, 2017. FERREIRA, A. B. H. Novo Dicionário da Língua Portuguesa. Segunda edição. Rio de Janeiro: Nova Fronteira, p.1314, 1986. FUNASA. Dengue instruções para pessoal de combate ao vetor: manual de normas técnicas. - 3. ed., rev. - Brasília: Ministério da Saúde: Fundação Nacional de Saúde, 84 p., 2001. FUNASA. Programa Nacional de Controle da Dengue (PNCD). Brasília: Ministério da Saúde: Fundação Nacional de Saúde, 2002. FURTADO, R.F.; LIMA, M.G.A.; NETO, M.A.; BEZERRA, J.N.S.; SILVA, M.G.V.; Larvicidal activity of essential oils against Aedes aegypti L (Diptera: Culicidae). Neotropical Entomology 34: p.843-847, 2005. GOMES, S.A; PAULA, A.R; RIBEIRO, A; MORAES, C.A.P; SANTOS, J.W.A.B; SILVA, C.P; SAMUELS, R.L.; Neem oil increases the efficiency of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae for the control of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) larvae. Parasites & Vectors,v.8, p.1280-1289, 2015. GREENFIELD B. P. J.; LORD,A. M.; DUDLEY E., BUTT, T. M.Conidia of the insect pathogenic fungus, Metarhizium anisopliae fail to adhere to mosquito larval cuticle R. Soc. open sci. out.2014. KAVALLIERATOS, N. G.; ATHANASSIOU, C. G.;AOUNTALA, M. M.; KONTODIMAS, D. C. Evaluation of the Entomopathogenic Fungi Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, and Isaria fumosorosea for Control of Sitophilus oryzae. Journal of Food Protection,v. 77, n. 1, p. 87-93, jan. 2014. KRAMER, M. U. G.; REINER JUNIOR, R. C.; BRADY, O. J.; MESSINA, J. P.; GILBERT, et al. Past and future spread of the arbovirus vectors Aedes aegypti and Aedes albopictus. Nature Microbiology, v. 4, p. 854–863, mar. 2019. LIU, C. P.; LIU, S. D. Formulation and characterization of the microencapsulated entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae MA126. Journal of Microencapsulation, v. 26 n.5, p. 377-384. 2009. JIANG A.; YUAN Y.; YANG, R.; ZHANG, N.; XIE, Y.; LAI, W.; PENG, X.; YANG, G.; GU, X. Beauveria bassiana. is a potential effective biological agent against Psoroptes ovis var. cuniculi mites, Biological Control, v. 131, p.43-48, abr. 2019 MAMPRIM, A. P., ALVES, L. F. A., PINTO, F. G. DA S., FORMENTINI, M. A., MARTINS, C. C., & BONINI, A. K. Efeito de defensivos agrícolas naturais e extratos vegetais sobre parâmetros biológicos de Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok. Semina: Ciências Agrárias, v.34 n.4, 2013. MARQUES, E. J.; ALVES, S. B.; MARQUES, I. M.R. Virulência de Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. A Diatraeasaccharalis (F.) (Lepidoptera: Crambidae) após armazenamento de conídios em baixa temperatura. An. Soc. Entomol. Bras., Londrina, v. 29, n. 2, p. 303-307, jun. 2000. MARTIANASARI, R.; HAMID, P. H. Larvicidal, adulticidal, and oviposition-deterrent activity of Piper betle L. essential oil to Aedes aegypti. Veterinary world, v.12 n.3, p. 367–371. Mar 2019. MASCARIN , G. M.; LOPES, R. B.; DELALIBERA JR.C. Í., FERNANDES, É. K. K.; LUZ, C.; FARIA, M.; Current status and perspectives of fungal entomopathogens used for microbial Control of arthropod pests in Brazil. Journal of Invertebrate Pathology in impression,2018. MERTZ, M. R.; ALVES, L. F. A.; MARCOMINI, A. M.; OLIVEIRA, D. G. P.; SANTOS, J. C. D. Efeito de produtos fitossanitários naturais sobre Beauveria basiana (Bals.) Vuill. in vitro. Biossay, Lavras, v. 5, n. 3, p. 1-10, 2010. MORRISON, A.C.; ZIELINSKI-GUTIERREZ, E.; SCOTT, T.W.; ROSENBERG, R. Defining Challenges and Proposing Solutions for Control of the Virus Vector Aedes aegypti. PLoS Med v.5, mar. 2008. MUTURI, E.J.; RAMIREZ, J.L.; DOLL, K.M.; BOWMAN, M.J. Combined Toxicity of Three Essential Oils Against Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) Larvae. J Med Entomol. V.54 n. 6 p. 1684-1691.nov. 2017 NUNES, M. R. T.; FARIA, N. R.; VASCONCELOS, J. M. D.; GOLDING N.; KRAEMER M. U. G.; OLIVEIRA L. F. D. et al. Emergence and potential for spread of Chikungunya virus in Brazil. BMC Medicine, v. 13, p. 102, abr. 2016. PAMPLONA, L. G. C.; LIMA, J. W. D. O.; CUNHA, J. C. D. L.; SANTANA, E. W. D. P. Avaliação do impacto na infestação por Aedes aegypti em tanques de cimento do município de Canindé, Ceará, Brasil, após a utilização do peixe Betta splendens como alternativa de controle biológico. Rev. Soc. Bras. Med. Trop., Uberaba, v. 37, n. 5, p. 400-404, out. 2004. PEREIRA, B.B.; OLIVEIRA, E.A.D. Determinação do potencial larvófago de Poecilia reticulata em condições domésticas de controle biológico. Cad. saúde colet., Rio de Janeiro, v. 22, n. 3, p. 241-245, Set. 2014 . POLANCZYK, R. A.; GARCIA, M. D. O.; ALVES, S. B. Potencial de Bacillus thuringiensis israelensis Berliner no controle de Aedes aegypti. Rev. Saúde Pública, São Paulo, v. 37, n. 6, p. 813-816, dez. 2003 PROCÓPIO, T. F.; FERNANDES, K.M.; PONTUAL E.V.; XIMENES, R.M.; DE OLIVEIRA, A.R.C.; SOUZA, C. D. S.; MELO, A. M. M. D. A.; NAVARRO, D. M. D. A. F.; PAIVA, P. M.G.; MARTINS, G. F.; NAPOLEÃO, T. H. Schinus terebinthi folius leaf extract causesmidgut damage, interfering with survival and development of Aedes aegypti larvae. PLoS ONEv.10 n. 5. mai. 2015.REYES-VILLANUEVA, F.; GARZA-HERNANDEZ, J.A.; GARCIA-MUNGUIA, A.M.; TAMEZ-GUERRA, P.; HOWARD, A.F.; RODRIGUEZ-PEREZ, M.A. Dissemination of Metarhizium anisopliae of low and high virulence by mating behavior in Aedes aegypti. Parasites Vectors, v. 4, p.1–7, Tamaulipas, set. 2011. REZENDE, G. L., MARTINS, A. J., GENTILE, C., FARNESI, L. C., PELAJO-MACHADO, M., PEIXOTO, A. A., & VALLE, D. Embryonic desiccation resistance in Aedes aegypti: presumptive role of the chitinized serosal cuticle. BMC Dev Biol. V. 8 n.82. Set. 2008. SAMPAIO, I.B.M. Estatística aplicada à experimentação animal. Fundação de Estudo e Pesquisa em Medicina Veterinária e Zootecnia, FEPMVZ-Editora, 265p. 2002. SANTOS, A. C. A. D.; ROSSATO, M.; SERAFINI, L. A.; BUENO, M.; CRIPPA, L. B., SARTORI, V. C.; DELLACASSA, E.; MOYNA, P. Efeito fungicida dos óleos essenciais de Schinus molle L. e Schinus terebinthi folius Raddi, Anacardiaceae, do Rio Grande do Sul. Rev. bras. farmacogn, Curitiba, v. 20, n. 2, p. 154-159, 2010. SCHOLTE, E.J.; TAKKEN,W.; KNOLS B.G. Infection of adult Aedes aegypti and Ae. albopictus mosquitoes with the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae..Acta Tropica v. 102 n. 3 p. 151-158 jul 2017. SCHULER-FACCINI, L.; RIBEIRO, E.M.; FEITOSA, I.M.L.; HOROVITZ, D.D.; CAVALCANTI, D.P.; et al. Possible association between Zika virus infection and microcephaly – Brazil, 2015. MMWR Morb Mortal WklyRep v. 65 p. 59–62, jan. 2016. SHI, W.B.; FENG, M.G. Lethal effect of Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, and Paecilomyces fumosoroseus on the eggs of Tetrany chuscinna barinus (Acari: Tetranychidae) with a description of a mite egg bioassay system, Biological Control, v. 30, p. 165-173, jun. 2004. SILVA, R. Z.; NEVES, P.M.OJ; SANTORO, P.H.; CAVAGUCHI, S.A. Efeito de agroquímicos à base de óleo mineral e vegetal sobre à viabilidade dos fungos entomopatogênicos Beauveria bassiana (Bals) Vuillemin, Metarhizium anisopliae ( Metch.) Sorokin e Paecilomyces sp. Bainier. Biossay, v.1, p. 1-5, 2006. SILVA-LUZ, C.L.; PIRANI, J.R. Anacardiaceae in Lista de Espécies da Flora do Brasil. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. 2015. Disponível em: <http://floradobrasil.jbrj.gov.br/jabot/floradobrasil/FB4398> SIMÕES, C.M.O. et al. Farmacognosia: da planta ao medicamento. Porto Alegre/Florianópolis, Ed. Universidade UFRGS/Ed. da UFSC, 1999. STANAWAY, J. D.; SHEPARD, D. S.; UNDURRAGA, E.A.; HALASA, Y. A.; COFFENG, L. E.; et al.The Global Burden of Dengue: an analysis from the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet Infect. Dis. v. 16, n. 6, p. 712–723, jun. 2016 TAMAI, M. A.; ALVES, S. B.; LOPES, R. B.; FAION, M.; PADULLA, L. F. L. Toxicidade de produtos fitossanitários para Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Arquivos Instituto Biológico, São Paulo, v. 69, n. 3, p. 89-96, 2002. THANGAMANI, S.; HUANG, J.; HART, C. E.; GUZMAN, H.; TESH, R. B. Vertical Transmission of Zika Virus in Aedes aegypti Mosquitoes. The American journal of tropical medicine and hygiene v. 95 n. 5 p. 1169-1173, nov. 2016. TRITSCH, S.R.; ENCINALES, L.; PACHECO, N.; CADENA, A.; CURE, C. Chronic joint pain 3 years after chikungunya virus infection largely characterized by relapsing-remitting symptoms. J Rheumatol, v. 46 n. 7 jul. 2019. WALL, R.; SHEARER, D. Veterinary Ectoparasites: Biology, Pathology and Control. Segunda edição. Blackwell Publishing Limited, Oxford, UK. 2001 WHITE, M. K.; WOLLEBO, H. S.; DAVID BECKHAM, J.; TYLER, K. L.; KHALILI, K. Zika virus: an emergent neuropathological agent. Ann. Neurol. v. 80, p. 479–489, out. 2016 WHO. Novaluron in drinking-water: use for vector control in drinking-water sources and containers. World Health Organization, Genebra, p. 1-6, 2007. ZARA, A.L.S.A.; SANTOS, S.M.; OLIVEIRA, E.S.F; CARVALHO, R.B.; COELHO, G.E. Estratégias de Controle do Aedes aegypti: Uma Revisão. Epidemiol Serv Saúde, Brasília, v. 25, n. 2, p. 391-404, jun. 2016. ZANLUCA, C.; MELO, V. C.; MOSIMANN, A. L.; SANTOS, G. I.; SANTOS, C. N.; LUZ, K. First report of autochthonous transmission of Zika virus in Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, v. 110, n. 4, p. 569-572, jun. 2015.por
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectmosquitospor
dc.subjectfungos entomopatogenicospor
dc.subjectóleo essencialpor
dc.subjectmosquitoeseng
dc.subjectentomopathogenic fungieng
dc.subjectessential oileng
dc.subject.cnpqMedicina Veterináriapor
dc.titleCompatibilidade de Beauveria sp. e Metarhizium sp. com óleo essencial da espécie vegetal Schinus molle L. e eficácia no controle de larvas de Aedes aegyptipor
dc.title.alternativeCompatibility of Beauveria sp. and Metarhizium sp. with essential oil of the plant species Schinus molle L. and efficiency in the control of Aedes aegypti larvaeeng
dc.typeDissertaçãopor
Appears in Collections:Mestrado em Ciências Veterinárias

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
2019 - Fernanda Sousa Faria.pdf1.72 MBAdobe PDFThumbnail

Download/Open Preview
Show simple item record Recommend this item


Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.